{"title":"Ribonucleinsuren: Infobox I","body":"<STRONG>Ribonucleins&#228;uren<\/STRONG><BR><\/BR><BR><\/BR>Wichtige Parameter zur Charakterisierung von RNA.<BR><\/BR><STRONG>a<\/STRONG> Die durch die heterocyclischen Basen bedingte <I>Absorption<\/I> von UV-Licht der Wellenl&#228;nge 260 nm, die zur optischen Messung von RNA-Konzentrationen benutzt werden kann (<A href='\/abo\/lexikon\/bio\/270'>Absorptionsspektrum<\/A>).<BR><\/BR><STRONG>b<\/STRONG> <I><A href='\/abo\/lexikon\/bio\/7305'>Basenzusammensetzung<\/A><\/I>, me&#223;bar nach Hydrolyse der RNA durch Alkali oder RNase zu den Mononucleotiden und anschlie&#223;ende Auftrennung und quantitative Bestimmung derselben durch Papier-<A href='\/abo\/lexikon\/bio\/13921'>Chromatographie<\/A> oder <A href='\/abo\/lexikon\/bio\/20803'>Elektrophorese<\/A>.<BR><\/BR><STRONG>c<\/STRONG> H&#228;ufigkeit von <I><A href='\/abo\/lexikon\/bio\/7298'>Basennachbarschaften<\/A><\/I>.<BR><\/BR><STRONG>d<\/STRONG> <I>Kettenl&#228;ngen<\/I>, bestimmbar im <A href='\/abo\/lexikon\/bio\/20788'>Elektronenmikroskop<\/A> oder durch Laufverhalten in der <A href='\/abo\/lexikon\/bio\/27114'>Gelelektrophorese<\/A>. RNA-Kettenl&#228;ngen werden vorwiegend in Anzahl von Nucleotiden (Basen, Abk. b; oder Kilobasen, Abk. kb) angegeben, jedoch auch durch relative <A href='\/abo\/lexikon\/bio\/43557'>Molek&#252;lmassen<\/A>, wobei ein Nucleotidrest im Durchschnitt einer relativen Molek&#252;lmasse von 350 entspricht.<BR><\/BR><STRONG>e<\/STRONG> <I>Sedimentationskonstante<\/I> (sog. S-Wert) bei Ultrazentrifugation (<A href='\/abo\/lexikon\/bio\/17948'>Dichtegradienten-Zentrifugation<\/A>, <A href='\/abo\/lexikon\/bio\/60546'>Sedimentation<\/A>); z.B. 16S-rRNA, die in der kleinen ribosomalen Untereinheit von Bakterien enthaltene RNA 5S-rRNA und 23S-rRNA, die in der gro&#223;en ribosomalen Untereinheit enthaltenen RNAs (<A href='\/abo\/lexikon\/bio\/56973'>Ribosomen<\/A>).<BR><\/BR><STRONG>f<\/STRONG> <I>Oligonucleotid<\/I>-<I>Fingerprint<\/I> (<A href='\/abo\/lexikon\/bio\/24555'>Fingerprint-Analyse<\/A>, <A href='\/abo\/lexikon\/bio\/47602'>Oligo-fingerprinting<\/A>): radioaktiv oder nicht radioaktiv markierte RNA wird mit Hilfe von Ribonuclease T<SUB>1<\/SUB> in Guanyls&#228;ure-terminierte Oligonucleotide gespalten; diese werden anschlie&#223;end durch ein zweidimensionales Verfahren aufgetrennt (1. Dimension: Elektrophorese bei pH 3,5, 2. Dimension: D&#252;nnschichtchromatographie). Durch entsprechende Detektionsmethoden (im Fall radioaktiv markierter RNA <A href='\/abo\/lexikon\/bio\/6443'>Autoradiographie<\/A>) wird schlie&#223;lich das f&#252;r jede RNA charakteristische zweidimensionale Muster (Fingerprint) markierter Oligonucleotide sichtbar gemacht.<BR><\/BR><STRONG>g<\/STRONG> Aufkl&#228;rung der <A href='\/abo\/lexikon\/bio\/57337'>RNA-Topologie<\/A> mittels <I><A href='\/abo\/lexikon\/bio\/57321'>RNA-Mapping<\/A><\/I>.<BR><\/BR><STRONG>h<\/STRONG> <I>Sequenzanalyse:<\/I> <A href='\/abo\/lexikon\/bio\/56404'>Restriktionsenzyme<\/A> f&#252;r RNA stehen nicht zur Verf&#252;gung, daher ist RNA-Sequenzanalyse technisch viel schwieriger als DNA-Sequenzanalyse und beschr&#228;nkt sich entweder auf kleine RNAs (tRNAs, kleine rRNAs) oder auf die terminalen Bereiche gr&#246;&#223;erer RNAs. F&#252;r die nicht direkt sequenzierbaren Bereiche l&#228;ngerer RNA-Ketten wird h&#228;ufig der &#8222;Umweg&#8220; &#252;ber die <A href='\/abo\/lexikon\/bio\/61127'>Sequenzierung<\/A> der entsprechenden Gene oder <A href='\/abo\/lexikon\/bio\/12603'>cDNAs<\/A> eingeschlagen."}